феноловый красный что это такое
Феноловый красный
Продажа
Покупая феноловый красный у нашей компании, вы можете быть уверены, что приобретаете его по самой выгодной цене на данный момент. Мы производим отгрузку по расписанию, что особенно удобно для вас. Постоянным клиентам гарантированы регулярные скидки и разнообразные акции по бонусам. Вы останетесь довольными нашей ценой и службой доставки.
Производство
Феноловый красный получают путем перемешивания кристаллов гидроксибензола, или фенола, с фталевым ангидридом в количестве 1:3. Затем очень медленно добавляют серную кислоту, до того момента, как смесь полностью пропитается кислотой. Нужно постоянно помешивать раствор. Затем надо нагреть смесь на маленьком пламени через асбестированный заслонитель несколько минут. При появлении клубов белого дыма прекращают нагревание, потому что в этом случае теряется фталевый ангидрид. В конце раствор обретает коричнево-красную окраску. Затем добавляют воду, при этом выпадает осадок. Это и есть феноловый красный, который при растворении в небольшом количестве спирта, может служить индикатором.
Внешний вид
Мелкодисперсный порошок, имеет темно-красный цвет. Хорошо растворяется в спирте и ацетоне. Кристаллы имеют ромбическую форму и характерный запах.
Применение
Применяется как кислотно-основной индикатор. Очевидны его преимущества. Феноловый красный не реагирует на повышение температуры. Визуализирует изменение содержания кислот и оснований в растворе. Принцип действия – переход окраски, начиная с желтого цвета до красного, при рН 6.5-8.2. Если спиртовой раствор концентрирован, окраска может иметь синеватый оттенок. Обычно применяется для титрования кислот, особенно в органической химии, для определения рН спиртов и эфиров. Уникальные химические свойства этого индикатора позволяют включать его в состав многих других индикаторов. С помощью фенолфталеина калориметрически определяют кислотность буферных и безбуферных растворов ( метод Михаэлиса). Если нужно провести качественный анализ, фенолфталеин применяют при опрыскивании цинка, магния, кадмия, свинца. Это и дает другую окраску. Феноловый красный быстро и точно контролирует состав жидких сред. Причина появления другого цвета – изменения в структуре молекул индикатора другой среде, это приводит к изменению параметров спектра поглощения смеси. Чтобы определить состав газовых сред, применяются специальные индикаторные бумажные полоски и трубки.
Данный индикатор широко используется в медицине, гистологии, биохимии, аналитической химии. Довольно долго его использовали как средство при запорах, но последние исследования обнаружили возможность канцерогенных свойств препарата, поэтому в свободной продаже его нет. Имеет свойство кумулироваться в организме.
Транспортировка
Практикуется перевозка железнодорожным транспортом в контейнерах, транспортными компаниями, автотранспортом, авиатранспортом. Препарат грузят в специальные цистерны, материалом которых является нержавеющая сталь. Если феноловый красный предназначен для медицинских целей, то его перевозят в оцинкованных емкостях.
Хранение
Хранят порошок фенолового красного в сухих помещениях, регулярно проветриваемых и с влажностью воздуха не более 85%, обязательно закупоренным. Срок годности неограниченный, таблетки хранятся около десяти лет. Спиртовой раствор годен в течение одного месяца.
Техника безопасности
Феноловому красному присвоен второй класс опасности по ГОСТу. Обязательно соблюдение правил безопасности при проведении опытов.
Влияние на организм
Может вызвать аллергические реакции и сыпь на коже. Проходят самопроизвольно.
Феноловый красный что это такое
Реактивы (фотографии) ч.5
Эозин получают бромированием флуоресцеина. Существуют два родственных соединения, которые называют «эозин»: эозин B и эозин Y.
Эозин Y
Эозин B
Иодэозин
Иодэозин (структура)
Сафранин. Краситель, который применяется в гистологии и цитологии.
Сафранин
Сафранин (обработка препарата)
Препарат (срез) ткани, окрашенный сафранином
Сафранин (структура)
Сафранин (модель молекулы)
Фуксин.
Один из первых синтетических красителей. Зеленые кристаллы с металлическим блеском, дают водные растворы пурпурно-красного цвета. Применяется в медицине, микробиологии, гистологии.
Фуксин дает интенсивный цвет и может использоваться для окраски тканей, однако в наше время краситель с этой целью практически не применяется, поскольку фуксин имеет плохую светостойкость (ткани быстро «выцветают»).
Фуксин (структура)
Везувин (анилиновый коричневый, краситель Бисмарка коричневый [Bismarck Brown]).
Сложная смесь фенолов растительного происхождения (таннины, дубильные вещества).
Таннины подавляют рост патогенных для многих растений микроорганизмов, защищают растения от поедания животными.
Таннин (танин)
Танниновая кислота (tannic acid). Структура
Агар-агар (агар)
Белый или желтоватый порошок. В основном представляет собой смесь полисахаридов агарозы и агаропектина. Агар-агар получают из некоторых видов морских водорослей.
Агар-агар не растворим в холодной воде, однако легко и быстро растворяется в горячей. При охлаждении полученного раствора образуется прозрачный гель.
Агар-агар широко применяется в микробиологии и пищевой промышленности. В частности, на основе агар-агара готовят гелеобразные питательные среды для культивирования микроорганизмов.
Микрочипы в вакцинах? Анализ крови даёт удивительные результаты
Дискуссии о вакцинах и вакцинации от COVID-19 не затухают, а, наоборот, становятся всё более горячими. Даже серьёзные медики сомневаются, что у них есть полное представление о составе тех препаратов, которыми делаются прививки. Что же там находится на самом деле?
От чего умирают люди?
Скепсис российских медиков лишь усилился после недавнего заявления академика А. Гинцбурга (Институт Гамалеи, разработчик линейки «Спутников»). Он упомянул какие-то «маркеры» в препарате «Спутник V», которые позволяют определить, кто вакцинацию проходил, а кто лишь купил справку о вакцинации. Об этих «маркерах» в официальной информации о «Спутнике V» ничего не говорится.
Масла в огонь споров и сомнений по вопросу о составе прививочных препаратов добавила конференция учёных-патологоанатомов, которая прошла 20 сентября этого года в Германии в Институте патологии в Ройтлингене (Pathologischen Institut in Reutlingen). В мероприятии, как отмечают СМИ, участвовало от 30 до 40 специалистов, в том числе из Австрии. Ключевыми фигурами были:
Скриншот страницы pathologie-konferenz.de/en/
В центре внимания участников конференции были результаты вскрытий восьми умерших после вакцинации от COVID-19, которые проводились в этом году под руководством профессора Арне Буркхардта. Результаты упомянутых вскрытий удивительным образом подтверждают выводы коллеги Арне Буркхардта профессора, доктора Питера Ширмахера (Prof. Dr. Peter Schirmacher). Последний сделал вскрытия более 40 умерших, имевших инфицирование вирусом ковида. Питер Ширмахер уверенно заявил, что около трети из них умерли не от ковида, а от вакцинации против ковида.
Эти заявления были сделаны летом, власти и подконтрольные им СМИ пытались замолчать или опровергать выводы профессора. И вот подоспела конференция патологов в Ройтлингене, которая вновь вскрыла смертельную опасность вакцинаций против ковида.
Они уже в нас
Конференция транслировалась по видеосвязи. На ней были представлены многочисленные фотографии и рисунки, наглядно дополнявшие картину, которую описывали выступавшие патологи.
Анализ тонких тканей умерших проводился с помощью специального, так называемого «темнопольного» микроскопа. Он позволил выявить содержание в тканях посторонних микрочастиц, которые по форме представляют собой явно неживые структуры достаточно правильной геометрической формы. Внешне они выглядят… как микросхемы!
Скриншот кадра видео Cause of death after COVID-19 vaccination & Undeclared components of the COVID-19 vaccines / odysee.com
Версий появления таких инородных объектов две. Либо они были введены в кровоток готовыми, либо сформировались в организме человека из наночастиц, содержащихся в вакцине. Случайное попадание посторонних частиц в тело человека исключается, поскольку одни и те же инородные объекты выявлены у всех умерших после вакцинации.
Упомянутый выше профессор, доктор Вернер Берггольц как специалист по микрочипам высказал своё мнение по поводу «открытия» патологов. Он не исключает возможности использования выявленных в тканях умерших частиц в качестве тех самых «маркеров» и «идентификаторов», о присутствии которых в вакцинах высказывали подозрения сторонники так называемой «теории заговора».
Pfizer с дополнениями
Это размышление профессора вполне корреспондирует с мнением тех специалистов, которые пытались и пытаются выявить «маркеры» вакцин без вскрытия, путём углублённого химического и физического изучения самих препаратов. Есть ряд исследований, в которых говорится об обнаружении в составе по крайней мере двух препаратов – Pfizer и Moderna (мРНК-вакцины) – графена (также оксид графена), который никакой медицинской роли не выполняет, но вполне годится на роль «маркера», «идентификатора». Масла в огонь добавило заявление Карен Кингстон (Karen Kingston), бывшей сотрудницы компании Pfizer. Кингстон утверждает, что хотя и в патентах на вакцину Pfizer оксид графена не упоминается, он фигурирует в ряде сопроводительных документов.
Скриншот кадра видео Stew Peters show «Former Pfizer Employee Confirms Poison in COVID ‘Vaccine’»/ redvoicemedia.com
Ещё одно направление изучения «пытливыми скептиками» необъявленных производителями вакцин компонентов и свойств препаратов – попытки идентифицировать получивших вакцины людей с помощью специальных технических средств. Та яростная энергия, с которой «Силиконовая мафия» (ведущие IT-корпорации, контролирующие интернет и социальные сети) удаляет публикации подобного рода, также наводят на мысль, что нет дыма без огня.
Трудно поверить, что сказанное на конференции в Ройтлингене по поводу инородных частиц в прививочных препаратах – лишь «дым», который быстро рассеется. Дыма без огня не бывает. Просто этот огонь тщательно скрывают. До того момента, когда начнется вселенский пожар, который уже не остановишь.
Участники конференции приняли резолюцию с призывом к властям Германии, Австрии и других стран начать проводить массовые патологоанатомические исследования умерших после вакцинаций от ковида, обращаться с соответствующими запросами к производителям препаратов и, конечно же, немедленно остановить дальнейший процесс прививок от COVID-19 до полного прояснения вопроса.
Казалось бы, при чём тут Гейтс?
Идея вживления микрочипа в тело человека через прививочный укол вынашивалась мировой элитой давно. В «Prevent Disease.Com» (электронном издании США, специализирующемся на разоблачении планов американской и международной «медицинской мафии») ещё в 2009 году появилась статья «Are Populations Being Primed For Nano-Microchips Inside Vaccines?». Название статьи на русском: «Подталкивается ли население к принятию наночипов, упрятанных в вакцины?». Как отмечалось в указанной статье, ещё в последние годы ХХ века удалось разработать микрочипы нового поколения, основанные на использовании нанотехнологий. Сверхкомпактные (не больше пылинки, радиус порядка 5 микромиллиметра, что примерно в 10 раз меньше радиуса волоса) и недорогие. Вот что, в частности, говорилось в указанной выше статье: «Запущенный Всемирной организацией здравоохранения сценарий с пандемией свиного гриппа как нельзя лучше подходит для пропаганды и принуждения населения добровольно согласиться на введение микрочипов через нановакцины. Всё это будет сделано под лозунгом «высшего блага» для человечества».
Пять лет тому назад была запущена частно-государственная инициатива под кодовым названием «ID2020». Её инициатором был Билл Гейтс, основатель и руководитель IT-корпорации Microsoft, одновременно основатель и руководитель крупнейшего в США благотворительного фонда. Инициатива была поддержана ООН. Суть её проста – провести глобальную цифровую идентификацию населения для того, чтобы мировая элита могла его держать под своим контролем. В первых выступлениях Билла Гейтса как главного энтузиаста тотальной цифровой идентификации он не скрывал, что идентификация через чипизацию является самым простым и надёжным способом решения поставленной задачи.
Но встретив непонимание и даже гневные протесты со стороны ряда политиков и общественных деятелей, Гейтс больше эту идею не озвучивал. И, как считают некоторые эксперты, продолжал её двигать, давая деньги на разработки наночипов, которые станут «бесплатной добавкой» к прививочным препаратам. Решением задачи «наночип и вакцина в одном флаконе» занимались совместно, в тесной кооперации две структуры, находящиеся под контролем Билла Гейтса: упомянутое выше частно-государственное партнёрство «ID2020» и Альянс по вакцинациям GAVI (также частно-государственное партнёрство). Уже в 2018 году все упоминания о наночипах в составе вакцин были удалены с сайтов «ID2020» и GAVI.
Что с того?
Хотя с конференции в Ройтлингене прошло почти два месяца, вы наверняка ничего про неё не слышали – и это яркий пример контроля, установленного «Силиконовой мафией» над каналами распространения информации.
Видео и другие материалы конференции блокируют всеми возможными способами, а там, где нельзя заблокировать, выступают с плакатными «разоблачениями» прозвучавших там «фейков».
Чего только не сделаешь ради воспитания в людях доверия к «спасительным» вакцинам!
Фукорцин : инструкция по применению
Состав
основные физико-химические свойства: жидкость темно-красного цвета с характерным запахом фенола;
международное непатентованное название: отсутствует.
вспомогательные вещества: спирт этиловый 96 %, вода очищенная.
Показания к применению
Для профилактики и лечения заболеваний кожи и слизистых оболочек, вызванных чувствительными к компонентам препарата возбудителями.
Противопоказания
Повышенная чувствительность к компонентам препарата, хронические аллергические дерматозы. Препарат не применять для лечения детей до 1 года, в период беременности и лактации.
Беременность и период лактации
Не применять женщинам в период беременности и кормления грудью.
Способ применения и дозы
Раствором смазывают поврежденные участки кожи и слизистых оболочек 1-3 раза в день до клинического выздоровления.
Побочное действие
Кратковременное ощущение жжения и боли. При продолжительном использовании возможно развитие дерматитов и местных аллергических реакций. При резорбтивном действии могут возникнуть рвота, головная боль, диарея.
Передозировка
При лечении детей, и при условии нанесения препарата на значительную поверхность повреждения могут возникнуть явления: головокружение, слабость,
расстройства дыхания. В этом случае надо дать больному доступ свежего воздуха и обратиться к врачу.
Взаимодействие с другими лекарственными средствами
Следует избегать одновременного применения противогрибковых антибиотиков местного применения, таких как гризеофульвин, клотримазол, препаратов, в состав которых входит фенол, борная кислота, а также гормональных препаратов. При одновременном применении с препаратами для наружного применения могут возникнуть аллергические реакции.
Если Вы применяете любые другие лекарственные средства, сообщите об этом врачу!
Меры предосторожности
Перед началом лечения проконсультируйтесь с врачом. Не следует использовать препарат вместе с продуктами питания.
Форма выпуска
По 25 мл во флаконе, помещенном в пачку из картона.
Хромоскопия
Применение прижизненных методов окраски слизистой оболочки становится неотъемлемой частью эндоскопического исследования и существенно расширяет ее возможности в диагностике функциональных и морфологических изменений органов пищеварительного тракта. Повышение интереса специалистов к хромоскопии отчасти связано с доступностью и простотой метода, его безопасностью. Применение витальных методов окраски позволяет эндоскописту выявлять мелкие поражения слизистой оболочки желудочно-кишечного тракта, их протяженность, определять границы, детализировать структурные особенности. Для этих целей используют растворы: генциана фиолетового (0,2%), индиго кармина (0,1-0,5%), конго красного (конгорот 0,3-0,5% водный раствор), Люголя (1-4% водный раствор), метиленового синего (0,25-0,5% водный раствор), нейтрального красного (1%), толуидинового синего (1% водный раствор), фенола красного (0,1%). Красители по механизму действия делятся на абсорбционные (раствор Люголя, метиленовый синий, толуидиновый синий), контрастирующие (индиго кармин, метиленовый синий) и реактивные (конго красный, раствор Люголя, фенол красный).
Эффективность витальных методов окраски основана на способности красителей контрастировать ткани, оказывать на них биологическое, химическое, флюоресцентное воздействие. Суть контрастирования ткани состоит в усилении рельефа слизистой оболочки желудочно-кишечного тракта при нанесении на нее красителя. Биологическое воздействие связано со способностью красителя проникать через мембрану клетки в цитоплазму и окрашивать ее (метиленовый синий). Химическое воздействие обусловлено способностью красителя вступать в химическую реакцию с веществами эпителиальных клеток и секретом (конго красный, нейтральный красный, раствор Люголя).
Применяются прямые методы хромоскопии: краситель наносится на обследуемую поверхность непосредственно во время эндоскопии, этот метод прост и не требует специальной подготовки. Непрямые методы более информативны, но требуют специальной подготовки органа перед нанесением красителя: механической очистки поверхности, применения муколитиков для растворения и удаления слизи, стимуляторов секреции, нейтрализации среды и т.п.
Хромоскопия может выполняться введением красителя непосредственно через биопсийный канал эндоскопа или (это предпочтительнее) распылением по катетеру, введенному через канал эндоскопа. Распыление красителя осуществляется в пищеводе и толстой кишке при направлении эндоскопа и кончика катетера к слизистой оболочке с использованием вращательных движений (по часовой стрелке и против) и одновременной подачей красителя. Для снижения перистальтической активности обследуемого органа перед исследованием целесообразно применение накануне спазмолитиков (например, при
При эзофагоскопии применяют растворы Люголя, метиленового синего, толуидинового синего и уксусной кислоты. Рекомендуется промыть пищевод раствором муколитика и наносить краситель через 2 минуты. Краситель действует на гликогенсодержащие клетки, абсорбируется и взаимодействует с гликогеном. Клиническими показаниями для применения раствора Люголя являются плоскоклеточный рак пищевода, рефлюкс-эзофагит, пищевод Барретта, в том числе для уточнения границ регенерации эпителия у больных, перенесших резекцию слизистой оболочки, фотодинамическую терапию, биполярную электрокоагуляцию.
Применяется от 20 до 50 мл 1-4% или 2-3% (что предпочтительнее) раствора Люголя. Нормальный, неизмененный неороговевающий эпителий пищевода через 2-3 секунды после нанесения красителя окрашивается в черный, темно-коричневый цвет или зеленовато-коричневый цвет, поверхность его становится морщинистой. Участки воспаления, злокачественного поражения слизистой оболочки пищевода, кишечной метаплазии, железистый эпителий, тяжелая дисплазия или метаплазия эпителия при пищеводе Барретта и желудок не окрашиваются.
Толуидиновый синий (Toluidine blue) окрашивает клеточные ядра, используется для диагностики очагов злокачественного перерождения слизистой оболочки желудочно-кишечного тракта. Окрашивание периульцерозной зоны в синий цвет может быть дифференциально-диагностическим признаком между доброкачественным и злокачественным изъязвлением. Применение хромоскопии с толуидиновым синим при пищеводе Барретта позволяет окрашивать участки кишечной метаплазии, но метод не позволяет дифференцировать кишечную и желудочную метаплазию. Поверхность орошается 30 мл 1% раствора уксусной кислоты, через 20 с наносится 10 мл 1% раствора толуидинового синего и через 30 с опять промывается раствором уксусной кислоты.
него в желудке описал Tsuda (1967).
Индиго кармин (Indigo carmine) не окрашивает слизистую оболочку, его применяют для контрастирования ее рельефа, а метиленовый синий, кроме того, окрашивает злокачественные новообразования и кишечную метаплазию. Индиго кармин, скапливаясь в щелях между эпителиальными клетками, усиливает рельефность слизистой оболочки, выделяя повреждения ее целостности, неровности рельефа, нарушения архитектоники.
Диагностическая значимость применения хромоскопии с индиго кармином особенно возрастает при использовании увеличительной эндоскопии (осмотр с применением эндоскопических видеосистем, видеоэндоскопов), в этих случаях высокая разрешающая способность приборов позволяет оценивать рельефность ворсинок при подозрении на пищевод Барретта. В желудке индиго кармин может использоваться для выявления ранних форм рака. Для диагностики глютеновой энтеропатии (целиакии) индиго кармин
может вводиться внутриартериально для получения более точного эндоскопического изображения поражения, его размера и протяженности. Для комбинированной хромогастроскопии применяют 0,1-1,7% (чаше 0,1-0,5%) раствор индиго кармина и 0,25-0,5% раствор метиленового синего. При прямом нанесении краски на слизистую оболочку с помощью фиброскопа мельчайшие структуры выявляются лучше, чем при непрямом. При применении последнего способа краситель, выпитый больным, может смешаться в желудке со слизью и желудочным соком, поэтому требуется тщательная подготовка больных к исследованию. Для устранения пенистой слюны и слизи, которые окрашиваются в синий цвет и мешают оценке результатов, за 20 мин до исследования больной выпивает 20-50 мл раствора, включающего протеолитический фермент, муколитик, буферный раствор и пеногаситель. Эффективным, поддерживающим рН среды на нейтральном уровне является буферный раствор, включающий 500 мг NaHC03, 200 мг КН2Р04, 800 мг Na2HP04. Состав и количество раствора могут варьировать в зависимости от секреторной функции желудка. Премедикация и анестезия — как для проведения обычной гастроскопии. При прямом способе хромогастроскопии после эндоскопического исследования пищевода, желудка и двенадцатиперстной кишки и оценки их видимых изменений на слизистую оболочку желудка в выбранном месте через распылительный катетер наносят 0,25% раствор метиленового синего или индиго кармина. Окрашивание может быть прицельным и тотальным. При прицельном окрашивании предварительно смывают слизь со слизистой оболочки 0,5% раствором бикарбоната натрия. Краситель покрывает поверхность слизистой оболочки желудка, делает ее рельефной или избирательно окрашивает отдельные участки. При непрямом способе хромогастроскопии желудок промывают через зонд раствором бикарбоната натрия, а затем вводят 10-20 мл 0,5% раствора метиленового синего (больной может выпить этот раствор). Срок аппликации красителя и время последующей гастроскопии устанавливают индивидуально в зависимости от моторной функции желудка — 30-120 мин. Если красителя много и он мешает проведению исследования, то можно аспирировать его через биопсийный канал эндоскопа. Результаты хромогастроскопии могут быть различными: краситель либо равномерно покрывает поверхность слизистой оболочки, скапливаясь в ямках и бороздках (он — индиго кармин — легко смывается с непораженной слизистой оболочки струей воды), либо стойко окрашивает в синий цвет язвенные и канцероматозные поражения (метиленовый синий). Слизь, слюна и фибрин окрашиваются в голубой цвет. Синее окрашивание может быть и при кишечной метаплазии. Окрашивание канцероматозной ткани равномерное и стойкое. Для исключения ложных результатов необходимо прибегать к прицельному удалению краски струей воды из катетера, снимать пласты окрашенной слизи щипцами и щеткой. Синее окрашивание при использовании метиленового синего объясняется тем, что при раке происходит диффузия краски через мембрану пораженной клетки, а при кишечной метаплазии — абсорбция ее эпителиальными клетками. Хромогастроскопия дает положительные результаты в том случае, если краска контактирует с тканью опухоли. При внутрислизистом и подслизистом росте методика неэффективна и синего окрашивания не происходит. Однако и в этих случаях можно выявить некоторые косвенные признаки, свидетельствующие о глубоком расположении опухоли: изменения структуры слизистой оболочки, эрозии, различные по размерам, форме и расположению гранулы, грубая поверхность слизистой оболочки с неравномерной гиперемией, образование складок и слияние концентрических складок слизистой оболочки, мелкие выемки с неправильными краями. Эти признаки характеризуют злокачественный процесс и становятся более отчетливыми при рассеивании красителя. При раке хромогастроскопия не дает ложноположительных результатов, ее эффективность достигает 77,8%.
Хромогастроскопия с метиленовым синим позволяет:
1) лучше оценивать изменения макроскопической картины слизистой оболочки, контролировать процесс заживления хронических язв на разных его этапах (границы, количество и качество грануляций);
2) выявлять мельчайшие доброкачественные повреждения (эрозии, рубцы, деформации складок слизистой оболочки);
3) определять распространенность злокачественной инфильтрации;
4) дифференцировать небольшие доброкачественные и злокачественные (ранние
формы рака) поражения;
5) обозначать множественные очаги злокачественного поражения ранним раком и определять возможность их удаления через эндоскоп диатермической петлей.
Главная цель применения метода — обнаружение участков, подозрительных на злокачественное поражение (ранний рак), и определение места проведения прицельной биопсии. Морфологическая верификация диагноза/заключения при хромоскопии является обязательной.
Хромодуоденоскопия с метиленовым синим: натощак за 2 ч 30 мин до исследования с 50 мл теплой воды обследуемому дают 1,5-2 г питьевой соды, чтобы «очистить» желудок от слизи, которая при ее наличии в желудке хорошо окрашивается метиленовым синим и затрудняет точное выявление окрашенной метиленовым синим собственно слизистой оболочки желудка («нормальная», т.е. без кишечной метаплазии или без ракового изменения, слизистая оболочка желудка метиленовым синим не окрашивается). Через 30 мин после приема соды исследуемый выпивает (ничем не запивая) 40 мл 0,25% раствора метиленового синего, а затем лежит в течение часа. Через 2 ч после приема раствора метиленового синего проводят эндоскопическое исследование пищевода, желудка и двенадцатиперстной кишки по общепринятой методике.
Необходимо отметить, что эндоскопическое исследование верхних отделов желудочно-кишечного тракта с использованием метиленового синего не затрудняет тщательного осмотра пищевода, желудка и двенадцатиперстной кишки. При исследовании пищевода практически у всех больных отмечается неинтенсивное (светло-голубое) окрашивание слизи в виде полос на стенках пищевода. В желудке (в «озерке») обычно остается небольшое количество окрашенной в синий цвет жидкости. При желании эту жидкость можно удалить электроотсосом. Поверхностный слизеобразующий эпителий желудка не окрашивается и выглядит, как при обычном эндоскопическом исследовании без применения метиленового синего. При наличии в желудке язвенных дефектов и «свежих» послеязвенных рубцов вокруг язвы или «свежего» рубца при близком рассматривании определяется синий «крап», чаще всего кольцевидно или звездчато окружающий язву или рубец. Гастродуоденоскопия с применением метиленового синего позволяет определять границу между слизистой оболочкой желудка и слизистой оболочкой двенадцатиперстной кишки. Эндоскопически это выглядит в виде четкого перехода розовой окраски, присущей слизистой оболочке желудка, в темно- или светло-синюю. Необходимо отметить, что эта граница не во всех случаях совпадает с анатомической линией перехода желудка в двенадцатиперстную кишку. Диффузность окраски слизистой оболочки двенадцатиперстной кишки метиленовым синим четко коррелирует с наличием в ней визуальных изменений: если луковичный и постбульбарный отделы двенадцатиперстной кишки практически у всех обычно окрашиваются диффузно, то у больных язвенной болезнью двенадцатиперстной кишки (с локализацией язвы в ее луковичной части) окраска слизистой оболочки луковицы двенадцатиперстной кишки во всех случаях носит
очаговый характер — не окрашивался «ореол» вокруг язвы (сама язва, вернее, ее фиброзный налет иногда может окраситься в синий цвет). Подобная картина определяется и при «свежих», и при «старых» рубцах. При наличии визуальных данных, характерных для дуоденита, обычно не окрашиваются различные по протяженности «очаги». Прослеживается существенная разница в гистологическом строении слизистой оболочки двенадцатиперстной кишки, взятой из участков, окрашенных и не окрашенных метиленовым синим. Особенно четкие корреляции между выявлением и не выявлением желудочной метаплазии, соответственно в окрашенных и не окрашенных участках слизистой оболочки двенадцатиперстной кишки метиленовым синим, установлены у больных язвенной болезнью двенадцатиперстной кишки. У них в кусочках слизистой оболочки луковицы, взятых из окрашенных метиленовым синим участков, желудочная метаплазия практически не выявляется. В то же время желудочная метаплазия обнаруживается в большинстве случаев, когда кусочки биопсируют из участков слизистой оболочки двенадцатиперстной кишки, не окрашенных метиленовым синим.
Индиго кармин (Indigo carmine) не окрашивает дуоденальные клетки и скапливается между ворсинами слизистой оболочки. Осмотр луковицы производят сразу после нанесения красителя через катетер. Нормальные и гипертрофированные ворсины в луковице двенадцатиперстной кишки четко контурируются, и нетрудно обнаружить их отсутствие вокруг эрозий, язв и рубцов. Метиленовый синий густо покрывает поверхность слизистой оболочки, окрашивая кишечную метаплазию и абсорбируется дуоденальными клетками. Чтобы оценить состояние слизистой оболочки, краситель смывают водой с помощью катетера. Если слизистая оболочка не окрашивается метиленовым синим, это значит, что ворсины отсутствуют и имеется поражение эпителия. Цвет слизистой оболочки вокруг язвы не изменяется, но кратер ее окрашивается в голубой цвет в связи с наличием экссудата и фибрина. В процессе эпителизации язвы абсорбционная способность восстанавливается и слизистая оболочка вновь начинает окрашиваться. В связи с разной способностью индиго кармина и метиленового синего к окрашиванию первый используют для оценки морфологических, а второй — функциональных нарушений слизистой оболочки двенадцатиперстной кишки. Оба красителя эффективны при выявлении небольших выступающих и углубленных поражений слизистой оболочки: гиперплазии ворсин, бруннеровых желез (желез двенадцатиперстной кишки) и лимфатических желез. Метиленовый синий позволяет определить восстановление эпителия при заживлении хронических язв.
Генциан фиолетовый (Cresyl violet) используется для выявления ранних злокачественных поражений желудочно-кишечного тракта, особенно эффективен при использовании увеличивающей аппаратуры. 0,2% раствор генциана фиолетового может распыляться после индиго кармина для уменьшения числа ошибок при выявлении ранних раков толстой кишки.
Методика хромогастроскопии с конго красным (Congo red, Biphenylene napIhdene sulfonic acid) претерпела со временем значительные изменения.
Конго красный — это рН-индикатор, суть метода состоит в реакции между красителем и хлористоводородной кислотой желудочного сока. Конго красный относится к реактивным
красителям, окрашивающим кислотопродуцирующие (обкладочные) клетки желудка.
Клиническое применение красителя — рак желудка, выявление кислотопродуцирующих клеток желудка.
Ю. М. Панцырев и соавт. (1978) при изучении секреторной топографии желудка с использованием конго красного придают особое значение предварительной нейтрализации кислого содержимого желудка и его эвакуации. После анестезии вводят желудочный зонд и желудок промывают водой. Затем по зонду вливают и через 5 мин удаляют 100-150 мл 4% раствора бикарбоната натрия, для окраски слизистой оболочки в желудок вводят 50 мл 0,5% раствора конго красного и через 8-10 мин краситель эвакуируют, после чего зонд извлекают. Затем производят гастроскопию и маркировку границ антрального отдела желудка. Обычно обнаруживают четкую границу между телом
желудка, имеющим черный цвет, и антральным отделом красного цвета. Необходимость в стимуляции выработки соляной кислоты гистамином или пентагастрином возникает редко, ее производят лишь у больных с гипоацидным состоянием. Краситель может использоваться самостоятельно или в комбинации с метиленовым синим: после предварительной обработки 0,5% раствором бикарбоната натрия распыляют вначале 0,3-0,5% раствор конго красного для выявления зон атрофии с участками разного рельефа, затем метиленовый синий — для определения кишечной метаплазии. Ранний рак при таком окрашивании выделяется как «отбеливаемая» область слизистой оболочки, не красящаяся ни одним из красителей. Конго красный может применяться для выявления кислотопродуцирующих зон, оценки полноценности ваготомии. После предварительной стимуляции секреции желудка гистамином или пентагастрином по время эндоскопии производится орошение слизистой оболочки 0,5% раствором бикарбоната с последующим распылением 0,3-0,5% раствора конго красного. При положительной реакции происходит изменение красного цвета красителя в черный в течение 1-2 минут. В результате происходит выделение кислотопродуцирующих зон, зон с пониженной секрецией кислоты или с отсутствием таковой.
Фенол красный (Phenosulfon phthalein, Phenol red) является индикатором рН, он обнаруживает щелочную рН изменением цвета от желтого до красного. Используют 0,1% раствор, который можно наносить непосредственно на слизистую оболочку без предварительной подготовки. Используют для диагностики Н. pylori. При инфицировании Н. pylori уреаза, синтезируемая инфекционным агентом, приводит к увеличению рН, что проявляется изменением цвета красителя. Рекомендуется также распыление 0,1% раствора фенола красного и 5% раствора мочевины после предварительного применения муколитика (АЦЦ), пеногасителя и М-холинолитика. Положительный результат проявляется изменением цвета от желтого до красного.
Хромогастроскопия с нейтральным красным. Этот метод применяют для изучения секреторной функции желудка. После тщательного эндоскопического исследования слизистой оболочки желудка и двенадцатиперстной кишки и визуальной оценки изменений слизистой оболочки в локтевую вену вводят 5-6 мл 1% раствора нейтрального красного. Наблюдение за выделением красителя слизистой оболочкой желудка и оценку его секреторной функции производят по следующим показателям: времени и месту появления нейтрального красного, интенсивности (слабое, умеренное) и характеру (очаговое, сетчатое, сплошное) окрашивания, времени максимального выделения красителя и границам окрашивания. Начало выделения нейтрального красного слизистой оболочкой желудка определяют по появлению малинового окрашивания, зафиксировать которое не составляет особого труда. Лишь в местах гиперемии и инфильтрации это сделать сложнее, поскольку нарушена экскреторная способность этих отделов и трудно произвести дифференцировку цвета. Нужно внимательно наблюдать за накоплением красителя в углублениях слизистой оболочки на этих участках. Для того чтобы определить первичный очаг выделения красителя, необходимо постоянно наблюдать за всей поверхностью слизистой оболочки, перемещая дистальный конец прибора по оси желудка и осматривая различные поля. Краситель может выделяться одновременно на всей поверхности слизистой оболочки желудка в области расположения обкладочных клеток или на отдельных ее участках. Это зависит от функциональных нарушений процесса образования соляной кислоты и морфологических изменений слизистой оболочки. При осмотре с близкого расстояния можно четко определить, как краситель появляется в желудочных ямках (точечные малиновые пятнышки на желудочных полях), окрашивает желудочные поля и скапливается в разделяющих их бороздках. Визуально можно определить количество желудочных ямок на желудочных полях, из которых выделяется краситель, что имеет большое значение для оценки функциональных и морфологических нарушений кислотообразующей функции желудка. По мере накопления выделившегося красителя он заполняет углубления между желудочными складками. Окрашенные в малиновый цвет участки слизистой оболочки четко дифференцируются от неокрашенных. Время от начала выделения до максимальной экскреции нейтрального красного в норме не превышает 4-5 мин. При повышенной экскреторной и кислотопродуцирующей функции желудка наблюдаются ускоренное выделение красителя, уменьшение интервала между началом выделения и интенсивным окрашиванием. При снижении секреторной способности желудка выделение красителя замедляется, указанный интервал увеличивается, а окрашивание остается очаговым. Определение границ кислотопродуцирующей зоны и антрального отдела желудка производят в процессе наблюдения за экскрецией нейтрального красного и заканчивают при достижении максимального выделения краски. На результаты исследования влияют такие факторы, как положение больного во время исследования, характер моторной функции желудка, скорость выделения красителя и интенсивность окрашивания. В положении больного на левом боку краситель стекает в тело желудка, в положении на спине — в антральный отдел, т.е. определяемые границы кислотопродуцирующей зоны могут быть уже или шире истинных. При выраженной перистальтике антрального отдела и резком повышении выделительной функции желудка ошибка более вероятна. При поверхностных гастритах в результате отека желудочные поля уплощаются, желудочные ямки сдавливаются, а бороздки между полями суживаются, становятся мелкими и в большинстве случаев совсем исчезают вследствие заполнения фибрином. Наблюдается характерная для поверхностного гастрита картина микрорельефа: ярко-розовые желудочные поля окружены нежными белыми полосками фибрина. Краситель не задерживается в желудочных ямках, полях и бороздках, стекает с них и скапливается между складками. Таким образом, при поверхностных гастритах не получается характерный сетчатый рисунок слизистой оболочки в момент выделения краски. В зависимости от степени атрофии слизистой оболочки снижается или полностью отсутствует кислотообразование в желудке. Оставшиеся участки слизистой оболочки сохраняют свою функцию, но она резко снижена: краситель выделяется поздно (к 10-15-й минуте), а окрашивание слабое, очаговое. Анализ результатов хромогастроскопии у больных язвенной болезнью показал, что характер расположения обкладочных клеток, величина и границы кислотообразующей зоны зависят от локализации язвы. При дуоденальных язвах отмечается равномерное сплошное распределение обкладочных клеток в дне и теле желудка. У 60% обследованных больных кислотообразующая зона занимала значительную часть слизистой оболочки желудка и спускалась в антральный отдел. При язвах желудка отмечены смещение нижней границы кислотопродуцирующей зоны вверх, особенно по малой кривизне, неравномерность распределения обкладочных клеток в этой зоне и наличие атрофических процессов. При этом чем выше в желудке располагалась язва, тем выше была и нижняя граница окрашивания. При локализации язвы в теле желудка малая кривизна, как правило, не окрашивалась, а по большой кривизне нижняя граница кислотопродуцирующей зоны проходила выше проекции угла желудка. Эти наблюдения позволили сделать вывод, что хронические язвы желудка локализуются вне зоны расположения обкладочных клеток или в переходной зоне.
Таким образом, хромогастроскопия позволяет дифференцировать специфичные изменения секреторной топографии желудка при различных заболеваниях и визуально разграничивать его функциональные зоны (кислотопродуцирующую и антральную).
Маркировку границ кислотопродуцирующей зоны производят тушью. Раствор китайской туши вводят в подслизистый слой желудка с помощью инъекционной иглы до образования темной точки. Количество точек зависит от целей исследования. Для маркировки резецируемого антрального отдела желудка необходимо обозначить его границы по малой и большой кривизне и передней стенке в 5-6 точках, а для проведения селективной проксимальной ваготомии — лишь по малой кривизне.
Хромодуоденоскопия с закисленным конго. Для изучения ощелачивающей функции антрального отдела желудка и определения рН двенадцатиперстной кишки можно использовать простую методику хромоскопии с закисленным конго. Закисление конго красного производят путем добавления к нему соляной кислоты из расчета 1 мл 1% раствора кислоты на 100 мл красителя (рН раствора 2,0). При этом раствор конго приобретает черный цвет. Его распыляют через катетер в луковице и нижележащих отделах двенадцатиперстной кишки, а затем фиксируют время восстановления окраски красителя, что имеет прогностическое значение. В двенадцатиперстной кишке, имеющей в норме щелочную среду, краситель быстро изменяет черную окраску на красную, а при кислом содержимом в двенадцатиперстной кишке сохраняет черный цвет.
Хромоколоноскопия. Индиго кармин и метиленовый синий можно применять при колоноскопии для контрастирования рельефа слизистой оболочки, что позволяет выявить незначительные изменения ее и наблюдать за динамикой патологического процесса. Красители наносят на слизистую оболочку прямым распылением через катетер под визуальным эндоскопическим контролем или вводят в виде клизмы. Неизмененная слизистая оболочка приобретает голубоватый цвет и зернистый вид. Такую эндоскопическую картину не удается увидеть без окрашивания. Атрофически измененные участки слизистой оболочки, доброкачественные полипы и язвы не окрашиваются метиленовым синим, четко определяются на голубом фоне окрашенной слизистой оболочки. При язвенном колите интенсивность окрашивания уменьшается или слизистая оболочка вовсе не окрашивается. На основании этих данных можно судить о фазе (активная, ремиссия) колита, его локализации и распространенности. Злокачественные поражения (малигнизированные полипы, язвенные и полиповидные формы рака) окрашиваются в интенсивный синий цвет, который не исчезает при отмывании водой. Индиго кармин, особенно при использовании аппаратуры высокого разрешения, в толстой кишке может использоваться для изучения поверхностных различий между гиперпластическими (имеющими типичную форму, гладкую поверхность) и аденоматозными полипами (имеющими дольчатую, пересеченную поверхность), повышает вероятность выявления раннего рака. Частота ложноотрицательных результатов хромоколоноскопии при атрофических изменениях слизистой оболочки составила 2,5%, а при злокачественных поражениях ложноотрицательных результатов не отмечено. В 46,6% случаев границы злокачественной инфильтрации при обычной колоноскопии казались уже, чем при хромоскопии.